Modelo experimental de perfusão pulmonar ex vivo em ratos: avaliação histopatológica e de apoptose celular em pulmões preservados com solução de baixo potássio dextrana vs. solução histidina-triptofano-cetoglutarato

Carregando...
Imagem de Miniatura
Citações na Scopus
4
Tipo de produção
article
Data de publicação
2012
Título da Revista
ISSN da Revista
Título do Volume
Editora
SOC BRASILEIRA PNEUMOLOGIA TISIOLOGIA
Citação
JORNAL BRASILEIRO DE PNEUMOLOGIA, v.38, n.4, p.461-469, 2012
Projetos de Pesquisa
Unidades Organizacionais
Fascículo
Resumo
Objective: To compare histopathological findings and the degree of apoptosis among rat lungs preserved with low-potassium dextran (LPD) solution, histidine-tryptophan-ketoglutarate (HTK) solution, or normal saline (NS) at two ischemia periods (6 h and 12 h) using an experimental rat model of ex vivo lung perfusion. Methods: Sixty Wistar rats were anesthetized, randomized, and submitted to antegrade perfusion via pulmonary artery with one of the preservation solutions. Following en bloc extraction, the heart-lung blocks were preserved for 6 h or 12 h at 4 degrees C and then reperfused with homologous blood for 60 min in an ex vivo lung perfusion system. At the end of the reperfusion, fragments of the middle lobe were extracted and processed for histopathological examination. The parameters evaluated were congestion, alveolar edema, alveolar hemorrhage, inflammatory infiltrate, and interstitial infiltrate. The degree of apoptosis was assessed using the TdT-mediated dUTP nick end labeling method. Results: The histopathological examination showed that all of the lungs preserved with NS presented alveolar edema after 12 h of ischemia. There were no statistically significant differences among the groups in terms of the degree of apoptosis. Conclusions: In this study, the histopathological and apoptosis findings were similar with the use of either LPD or HTK solutions, whereas the occurrence of edema was significantly more common with the use of NS.
Objetivo: Comparar os achados histopatológicos e de apoptose em pulmões de ratos preservados em soluções low-potassium dextran (LPD, baixo potássio dextrana), histidine-tryptophan-ketoglutarate (HTK, histidina-triptofano-cetoglutarato) ou salina normal (SN) em 6 h e 12 h de isquemia pela utilização de um modelo experimental de perfusão pulmonar ex vivo. Métodos: Sessenta ratos Wistar foram anestesiados, randomizados e submetidos à perfusão anterógrada pela artéria pulmonar com uma das soluções preservadoras. Após a extração, os blocos cardiopulmonares foram preservados por 6 ou 12 h a 4°C, sendo então reperfundidos com sangue homólogo em um sistema de perfusão ex vivo durante 60 min. Ao final da reperfusão, fragmentos do lobo médio foram extraídos e processados para histopatologia, sendo avaliados os seguintes parâmetros: congestão, edema alveolar, hemorragia alveolar, hemorragia, infiltrado inflamatório e infiltrado intersticial. O grau de apoptose foi avaliado pelo método TdT-mediated dUTP nick end labeling. Resultados: A histopatologia demonstrou que todos os pulmões preservados com SN apresentaram edema alveolar após 12 h de isquemia. Não houve diferenças em relação ao grau de apoptose nos grupos estudados. Conclusões: No presente estudo, os achados histopatológicos e de apoptose foram semelhantes com o uso das soluções LPD e HTK, enquanto a presença de edema foi significativamente maior com o uso de SN.
Palavras-chave
Organ preservation, Organ preservation solutions, Lung transplantation, Reperfusion injury, Apoptosis, Preservação de órgãos, Soluções para preservação de órgãos, Transplante de pulmão, Traumatismo por reperfusão, Apoptose
Referências
  1. Burns AT, 1998, TRANSPLANTATION, V66, P872, DOI 10.1097/00007890-199810150-00010
  2. Canzian M, 2007, CLINICS, V62, P23
  3. Cardoso PFG, 2011, J BRAS PNEUMOL, V37, P589
  4. Cypel M, 2009, J HEART LUNG TRANSPL, V28, P753, DOI 10.1016/j.healun.2009.05.009
  5. de Perrot Marc, 2004, Semin Thorac Cardiovasc Surg, V16, P300, DOI 10.1053/j.semtcvs.2004.09.012
  6. de Perrot M, 2003, AM J RESP CRIT CARE, V167, P490, DOI 10.1164/rccm.200207-670SO
  7. Eghtesad B, 2006, LIVER TRANSPLANT, V12, P196, DOI 10.1002/lt.20698
  8. Fischer S, 2000, AM J RESP CRIT CARE, V162, P1932
  9. Fiser SM, 2002, ANN THORAC SURG, V73, P1041, DOI 10.1016/S0003-4975(01)03606-2
  10. Baumgartner WA, 2002, ANN THORAC SURG, V73, P1047
  11. GAVRIELI Y, 1992, J CELL BIOL, V119, P493, DOI 10.1083/jcb.119.3.493
  12. Gohrbandt B, 2005, J THORAC CARDIOV SUR, V129, P80, DOI 10.1016/j.jtcvs.2004.04.040
  13. Hengartner MO, 2000, NATURE, V407, P770, DOI 10.1038/35037710
  14. Hertz MI, 2002, J HEART LUNG TRANSPL, V21, P950, DOI 10.1016/S1053-2498(02)00498-9
  15. INGEMANSSON R, 1995, ANN THORAC SURG, V60, P1210, DOI 10.1016/0003-4975(95)00548-Y
  16. KESHAVJEE SH, 1992, J THORAC CARDIOV SUR, V103, P314
  17. KESHAVJEE SH, 1989, J THORAC CARDIOV SUR, V98, P529
  18. Mangus RS, 2006, LIVER TRANSPLANT, V12, P226, DOI 10.1002/lt.20552
  19. Miranda L, 2004, ACTA CIR BRAS, V19, P3
  20. Nath DS, 2005, J HEART LUNG TRANSPL, V24, P2243, DOI 10.1016/j.healun.2005.06.019
  21. Pego-Fernandes PM, 2010, TRANSPL P, V42, P444, DOI 10.1016/j.transproceed.2010.01.016
  22. Pego-Fernandes PM, 2010, J BRAS PNEUMOL, V36, P490
  23. Potdar S, 2004, CLIN TRANSPLANT, V18, P661, DOI 10.1111/j.1399-0012.2004.00262.x
  24. PUSKAS JD, 1992, J THORAC CARDIOV SUR, V104, P83
  25. Quadri SM, 2005, AM J TRANSPLANT, V5, P292, DOI 10.1111/j.1600-6143.2004.00701.x
  26. Ringe B, 2005, TRANSPL P, V37, P316, DOI 10.1016/j.transproceed.2004.12.009
  27. ROSL F, 1992, NUCLEIC ACIDS RES, V20, P5243, DOI 10.1093/nar/20.19.5243
  28. Sage E, 2008, RESP RES, V9, DOI 10.1186/1465-9921-9-19
  29. Simoes EA, 2011, TRANSPL P, V43, P1520, DOI 10.1016/j.transproceed.2010.12.001
  30. Steen S, 2007, ANN THORAC SURG, V83, P2191, DOI 10.1016/j.athoracsur.2007.01.033
  31. Wittwer T, 1999, J HEART LUNG TRANSPL, V18, P684, DOI 10.1016/S1053-2498(98)00061-8