Engraftment of human adipose derived stem cells delivered in a hyaluronic acid preparation in mice

Carregando...
Imagem de Miniatura
Citações na Scopus
5
Tipo de produção
article
Data de publicação
2012
Título da Revista
ISSN da Revista
Título do Volume
Editora
ACTA CIRURGICA BRASILEIRA
Autores
DIETRICH, Isa
COCHET, Olivia
VILLAGEOIS, Phi
Citação
ACTA CIRURGICA BRASILEIRA, v.27, n.4, p.283-289, 2012
Projetos de Pesquisa
Unidades Organizacionais
Fascículo
Resumo
PURPOSE: To evaluate the implant of human adipose derived stem cells (ADSC) delivered in hyaluronic acid gel (HA), injected in the subcutaneous of athymic mice. METHODS: Control implants -HA plus culture media was injected in the subcutaneous of the left sub scapular area of 12 athymic mice. ADSC implants: HA plus ADSC suspended in culture media was injected in the subcutaneous, at the contra lateral area, of the same animals. With eight weeks, animals were sacrificed and the recovered implants were processed for extraction of genomic DNA, and histological study by hematoxilin-eosin staining and immunufluorescence using anti human vimentin and anti von Willebrand factor antibodies. RESULTS: Controls: Not visualized at the injection site. An amorphous substance was observed in hematoxilin-eosin stained sections. Human vimentin and anti von Willebrand factor were not detected. No human DNA was detected. ADSC implants - A plug was visible at the site of injection. Fusiform cells were observed in sections stained by hematoxilin-eosin and both human vimentin and anti von Willebrand factor were detected by immunofluorescence. The presence of human DNA was confirmed. CONCLUSION: The delivery of human adipose derived stem cells in preparations of hyaluronic acid assured cells engraftment at the site of injection.
OBJETIVO: Avaliar o implante de células tronco do tecido adiposo humano (CTTAH) em gel de ácido hialurônico (AH), injetados no tecido subcutâneo de camundongos atímicos. MÉTODOS: Implantes controle - HA com meio de cultura foram injetados no tecido subcutâneo da região infraescapular esquerda de 12 camundongos atímicos. Implantes de CTTAH: HA com CTTAH suspensas em meio de cultura foi injetado no subcutâneo da região contra lateral, dos mesmos animais. Com oito semanas, os animais foram sacrificados e os implantes recuperados foram processados para extração de DNA genômico, estudo histológico por coloração por hematoxilina eosina e imnuoflurescência utilizando anticorpos anti vimentina humana e anti fator de von Willebrand. RESULTADOS: Controles - implantes não visualizados no local da injeção. Uma substância amorfa foi observada nos cortes corados por hematoxilina eosina. Vimentina humana e fator anti von Willebrand não foram identificados. DNA humano não foi detectado. Implantes de CTTAH - Uma massa era visível no local da injeção. Células fusiformes foram observadas nos corte corados com hematoxilina eosina. Tanto vimentina humana quanto fator de von Willebrand foram identificados pela imunofluorescência. A presença de DNA humano foi confirmada. CONCLUSÃO: O implante de células tronco do tecido adiposo humano em veículo de ácido hialurônico gel assegurou a manutenção das células no local do implante.
Palavras-chave
Adult Stem Cells, Tissue Engineering, Cell Transplantation, Adipose Tissue, Hyaluronic Acid, Biocompatible Materials, Mice, Células-Tronco Adultas, Engenharia Tecidual, Transplante de Células, Tecido Adiposo, Ácido Hialurônico, Materiais Biocompatíveis, Camundongos
Referências
  1. Allemann IB, 2008, CLIN INTERV AGING, V3, P629
  2. Altman AM, 2010, PLAST RECONSTR SURG, V125, P63, DOI 10.1097/PRS.0b013e3181c2a59a
  3. Campo Giuseppe M, 2004, Glycoconj J, V20, P133
  4. Chan B P, 2008, Eur Spine J, V17 Suppl 4, P467, DOI 10.1007/s00586-008-0745-3
  5. De Ugarte DA, 2003, ANN PLAS SURG, V50, P215, DOI 10.1097/01.SAP.0000029661.38066.15
  6. De Ugarte DA, 2003, CELLS TISSUES ORGANS, V174, P101, DOI 10.1159/000071150
  7. Evanko SP, 2007, ADV DRUG DELIVER REV, V59, P1351, DOI 10.1016/j.addr.2007.08.008
  8. Flynn L, 2009, J BIOMED MATER RES A, V89A, P929, DOI 10.1002/jbm.a.32044
  9. Fournier N, 1996, BIOMATERIALS, V17, P1659, DOI 10.1016/0142-9612(96)87645-9
  10. Fraser JK, 2002, CYTOTHERAPY, V4, P509, DOI 10.1080/146532402761624647
  11. Ganey T, 2009, SPINE, V34, P2297, DOI 10.1097/BRS.0b013e3181a54157
  12. Garcia-Olmo D, 2009, DIS COLON RECTUM, V52, P79, DOI 10.1007/DCR.0b013e3181973487
  13. Halicka HD, 2009, INT J MOL MED, V23, P695, DOI 10.3892/ijmm_00000182
  14. Hausman D B, 2001, Obes Rev, V2, P239, DOI 10.1046/j.1467-789X.2001.00042.x
  15. Itoi Y, 2010, J PLAST RECONSTR AES, V63, P858, DOI 10.1016/j.bjps.2009.01.069
  16. Kawaguchi N, 1998, P NATL ACAD SCI USA, V95, P1062, DOI 10.1073/pnas.95.3.1062
  17. Mandriota SJ, 1997, J CELL SCI, V110, P2293
  18. Montesano R, 1996, LAB INVEST, V75, P249
  19. Négrel R, 2001, Methods Mol Biol, V155, P225
  20. Pachence JM, 2000, PRINCIPLES TISSUE EN, P269
  21. Pardue Erin L, 2008, Organogenesis, V4, P203
  22. Pauloin T, 2009, MOL VIS, V15, P577
  23. Pepper MS, 1998, J CELL PHYSIOL, V177, P439, DOI 10.1002/(SICI)1097-4652(199812)177:3<439::AID-JCP7>3.0.CO;2-2
  24. Rigotti G, 2007, PLAST RECONSTR SURG, V119, P1409, DOI 10.1097/01.prs.0000256047.47909.71
  25. Schenke-Layland K, 2009, J SURG RES, V153, P217, DOI 10.1016/j.jss.2008.03.019
  26. Sclafani A P, 2000, Facial Plast Surg, V16, P29, DOI 10.1055/s-2000-7323
  27. Senoo H, 1998, J GASTROEN HEPATOL, V13, P19
  28. Senoo H, 1998, J GASTROEN HEPATOL, V13, pS19
  29. Suzuki K, 2004, CIRCULATION, V14, P219
  30. Vacanti CA, 2000, ORTHOP CLIN N AM, V31, P351, DOI 10.1016/S0030-5898(05)70155-3
  31. VARZANEH FE, 1994, METABOLISM, V43, P906, DOI 10.1016/0026-0495(94)90275-5
  32. Weissberg PL, 2005, HEART, V91, P696, DOI 10.1136/hrt.2004.038224
  33. Zuk PA, 2002, MOL BIOL CELL, V13, P4279, DOI 10.1091/mbc.E02-02-0105
  34. Zuk PA, 2001, TISSUE ENG, V7, P211, DOI 10.1089/107632701300062859