TESTING A SUBTYPE-SPECIFIC GP41 AMPLIFICATION METHOD FOR GENOTYPING INDIVIDUALS INFECTED BY HUMAN IMMUNODEFICIENCY VIRUS TYPE-1 IN THE BRAZILIAN POPULATION OF ITAJAI, SOUTH BRAZIL

Carregando...
Imagem de Miniatura
Citações na Scopus
1
Tipo de produção
article
Data de publicação
2013
Título da Revista
ISSN da Revista
Título do Volume
Editora
INST MEDICINA TROPICAL SAO PAULO
Autores
WEBER, Laura I.
SANTOS, Marisa dos
KAWAKUBO, Edson M.
MARTINEZ, Ana Maria B.
Citação
REVISTA DO INSTITUTO DE MEDICINA TROPICAL DE SAO PAULO, v.55, n.2, p.91-99, 2013
Projetos de Pesquisa
Unidades Organizacionais
Fascículo
Resumo
The method used by YAGYU et al. for the subtype-specific polymerase chain reaction (PCR) amplification of the gp41 transmembrane region of the human immunodeficiency virus type-1 (HIV-1) env gene, was tested. HIV-1 proviral DNA from 100 infected individuals in Itajai, South Brazil was used to analyze this method. Seventy individuals were determined according to this method as having PCR products at the expected size for subtypes B, C, D and F. Of these individuals, 26 (37.1%) were observed as having the expected amplification for subtype C, and 42 (60%) were observed as having the expected products for subtypes B and D. Of the subtype B and D amplicons, 16 (22.9%) were classified as subtype D, and 26 (37.1%) were classified as subtype B. Two individuals (2.9%) had amplicons that were observed after subtype F-specific amplification was performed. Sequencing and comparing the patient sequences to reference sequences confirmed the classification of sequences of subtypes C and B. However, sequences that were falsely determined as being D and F in the PCR assay were determined as being subtypes C and B, respectively, by sequence analysis. For those individuals from whom no amplified products were obtained, a low viral load that was indicated in their patient history may explain the difficulty in subtyping by PCR methods. This issue was demonstrated by the results of ANOVA when testing the effect of viral load on the success of PCR amplification. The alignment of the obtained sequences with HIV-1 reference sequences demonstrated that there is high intra-subtype diversity. This indicates that the subtype-specific primer binding sites were not conserved or representative of the subtypes that are observed in the Brazilian populations, and that they did not allow the correct classification of HIV-1 subtypes. Therefore, the proposed method by YAGYU et al. is not applicable for the classification of Brazilian HIV-1 subtypes.
A metodologia para amplificação subtipo-específica por PCR da região transmembrana do gene env (gp41) do HIV-1, descrita por Yagyu e colaboradores, foi testada a partir de DNA proviral de 100 pacientes infectados pelo HIV-1 de Itajaí, Sul do Brasil. Setenta indivíduos apresentaram produtos amplificados e correspondentes aos subtipos B, C, D e F de acordo com a metodologia escolhida. Destes indivíduos, 26 (37,1%) apresentaram a amplificação esperada para o subtipo C de acordo com a metodologia; 42 (60%) apresentaram os produtos esperados para os subtipos B e D, sendo que na etapa seguinte de diferenciação destes subtipos, 16 (22,9%) corresponderam ao subtipo D e 26 (37,1%) ao subtipo B. Dois indivíduos (2,9%) mostraram produtos amplificados após a amplificação específica para o subtipo F. O sequenciamento e a comparação com sequências referências confirmou a subtipagem de HIV-1 C e B obtida pela metodologia. No entanto, indivíduos subtipados erroneamente como HIV-1 D e F pela metodologia, foram classificados pela comparação com sequências referências como subtipos C e B, respectivamente. Em relação aos indivíduos que não mostraram produtos amplificados, a baixa carga viral observada no histórico destes pacientes seria em parte responsável pela dificuldade na subtipagem pela metodologia de PCR, como demonstrado pelo resultado significativo no ANOVA ao testar o efeito da carga viral no sucesso da amplificação. O alinhamento das sequências obtidas com sequências referências de HIV-1 correspondentes à região da gp41 demonstrou que há uma alta diversidade intra-subtipo e que as regiões a partir das quais foram desenhados os oligonucleotídeos iniciadores HIV-1 subtipo-específicos não são conservadas nem suficientemente representativas dos subtipos observados nas populações brasileiras para permitir sua correta identificação. Portanto, esta metodologia não é aplicável para populações virais brasileiras
Palavras-chave
HIV-1, gp41, Viral load, Subtypes, PCR, South Brazil
Referências
  1. Agwale SM, 2001, J CLIN MICROBIOL, V39, P2110, DOI 10.1128/JCM.39.6.2110-2114.2001
  2. Bello G, 2006, AIDS, V20, P763, DOI 10.1097/01.aids.0000216377.84313.52
  3. Brasil. Ministerio da Saude. Secretaria de Vigilancia em Saude Departamento de DST, 2011, B EP AIDS DST
  4. Costa SM, 1995, AIDS RES HUM RETROV, V11, P1143
  5. Couto-Fernandez JC, 2006, AIDS RES HUM RETROV, V22, P207, DOI 10.1089/aid.2006.22.207
  6. Este JA, 2007, LANCET, V370, P81, DOI 10.1016/S0140-6736(07)61052-6
  7. Gadelha SR, 2003, MEM I OSWALDO CRUZ, V98, P461, DOI 10.1590/S0074-02762003000400005
  8. Gao F, 1996, J VIROL, V70, P1651
  9. Guimaraes ML, 2001, J CLIN VIROL, V21, P143, DOI 10.1016/S1386-6532(01)00158-5
  10. Guimaraes Monick Lindenmeyer, 2002, AIDS Research and Human Retroviruses, V18, P1261, DOI 10.1089/088922202320886307
  11. Heeney JL, 2006, SCIENCE, V313, P462, DOI 10.1126/science.1123016
  12. Hemelaar J, 2012, TRENDS MOL MED, V18, P182, DOI 10.1016/j.molmed.2011.12.001
  13. Locateli D, 2007, J MED VIROL, V79, P1455, DOI 10.1002/jmv.20955
  14. Martinez A.M., 2002, REV SOC BRAS MED TRO, V35, P471
  15. Martinez AMB, 2006, AN ACAD BRAS CIENC, V78, P113, DOI 10.1590/S0001-37652006000100011
  16. Peeters M., 2000, 2000 HIV SEQUENCE CO
  17. Pieniazek D, PHYLOGENETIC ANAL GP
  18. Robertson DL, 2000, SCIENCE, V288, P55
  19. Sa Filho DJ, 2006, AIDS RES HUM RETROV, V22, P1
  20. Sabino EC, 1996, AIDS, V10, P1579
  21. Sanders RW, 2002, 2002 HIV SEQUENCE CO
  22. Santos AF, 2010, VIRUSES-BASEL, V2, P503, DOI 10.3390/v2020503
  23. Santos AF, 2007, JAIDS-J ACQ IMM DEF, V45, P328
  24. Santos AF, 2006, AIDS, V20, P2011
  25. Tamura K, 2011, MOL BIOL EVOL, V28, P2731, DOI 10.1093/molbev/msr121
  26. Teixeira SLM, 2004, J CLIN VIROL, V31, P221, DOI 10.1016/j.jcv.2004.03.016
  27. Tupinambás Unaí, 2006, Braz J Infect Dis, V10, P82, DOI 10.1590/S1413-86702006000200003
  28. Yagyu F, 2002, J VIROL METHODS, V101, P11, DOI 10.1016/S0166-0934(01)00415-3
  29. Yagyu F, 2005, J MED VIROL, V76, P16, DOI 10.1002/jmv.20318